Cultivando hongos con Peróxido de Hidrógeno--Actualizaciones

A medida que gano más experiencia y me doy cuenta de nueva información, continuamente encuentro la necesidad de hacer pequeños cambios al manual del peróxido para mantenerlo de acuerdo con mi comprensión actual del uso eficaz del método. Si encuentro inconvenientes significativos en un procedimiento previamente publicado, yo se lo comunicaré aquí. También anunciaré algunas noticias de adelantos en los procedimientos. Por supuesto, las nuevas ediciones del manual generalmente contendrán material adicional que no se ha anunciado aquí.

Esta página también está evolucionando en un lugar propio para poner anuncios, como nuevas ofertas de productos o los nuevos desarrollos con el sitio de internet. Así que por favor vuelva a chequearla regularmente.

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  • Actualizaciones a la 2 Edición

    1) Actualmente cocino a presión el medio de agar sólo durante 20 minutos, para evitar la caramelización, y he reducido la riqueza nutritiva del medio MYA que uso, para evitar la producción en exceso de metabolitos tóxicos por parte del micelio. Esencialmente, he partido por la mitad la receta para el medio MYA, salvo por la malta en polvo, de la que ahora uso aproximadamente 12 gms por litro. Esté seguro de usar extracto de malta suave o extra-suave, para evitar productos de caramelización. Estos cambios no afectan materialmente el uso del peróxido --ellos simplemente están más a favor de la salud del micelio a largo plazo que lo que yo presenté originalmente.

    2) Mi proporción de éxito de blanco de hongo en grano (trigo de invierno) sin contaminar está ahora cerca de 99%. Sin embargo, después de un período relativamente libre de problemas con el substrato en masa, tuve un aumento de la contaminación en los cultivos de P. eryngii y H. erinaceus en pellet combustible, que yo informé en mi página de internet. Este problema ahora ha disminuído. Pudo haber sido el resultado de una pérdida en mi olla a presión, dándome una esterilización pobre de mis suplementos de nitrógeno, pero también tomé acciones para asegurar el mezclado completo del peróxido en el substrato, y para evitar que se cayeran pedacitos de pellet combustible que rebotaban en la superficie cercana y caían dentro de las bolsas a medida que las llenaba.

    Además, descubrí recientemente que mi agua de la canilla venía con partículas, las cuales aumentaban con la llegada de la estación lluviosa. Por supuesto, toda el agua que se usa sin esterilizar a presión debe estar limpia y libre de partículas, que pueden llevar enzimas que descomponen el peróxido.

    Finalmente, descubrí que pequeños residuos de aserrín se estaban alojando en el exterior de mi balde de 20 litros, cerca del borde cuando yo abría o cerraba la tapa. Estos residuos podrían luego recoger contaminación, luego de lo cual podrían caer en mis bolsas de substrato final cuando volcaba el aserrín desde el balde. Ahora intento vigilar estos residuos de aserrín y eliminarlos con un cepillo antes de llenar cada bolsa con substrato.

    Ahora sello todas mis bolsas de substrato por ligamiento con lazos de torsión. Resulta que H. ulmarius, H. erinaceus, y P. eryngii, todos pueden alcanzar la formación de primordios en bolsas que han sido selladas de esta manera, sin filtros microporosos. Sin embargo, aunque al principio pensé que este éxito era debido al oxígeno proporcionado por la descomposición del peróxido en el substrato a medida que el micelio crece, resulta ahora que también debe haber oxígeno difundiendo a través de las mismas bolsas plásticas (ya que el micelio no crecerá en recipientes plásticos herméticamente sellados). Entonces--Si usted usa bolsas plásticas de basura para contener el substrato en masa, como se sugirió en el manual, intente conseguir bolsas finas (0.5 mil o menos) hecha de de plástico de alta densidad en lugar de las bolsas más comúnes hechas de plástico blando y grueso. Las bolsas delgadas permitirán una mejor difusión del oxígeno. Y las bolsas más gruesas probablemente son de PVC, que puede liberar sustancias químicas que atacan el sistema endocrino en el substrato para hongo. También me han dicho que algunas de las bolsas más gruesas se impregnan con fungicida.

    También, recientemente me he convencido que el procedimiento para "limpiar" el micelio de contaminantes ocultos es más importante de lo que previamente había pensado, y que para asegurar cultivos exitosos debe hacerse regularmente (por lo menos cada tercer transferencia, o en cada transferencia si usted deja sus cultivos en agar durante mucho tiempo entre transferencias). Esto es verdad esté o no usando peróxido en su substrato final, pero es especialmente importante si no lo está usando. Asegúrese de no cortar totalmente a través del agar cuando usted saca las cuñas de agar para inocular desde una placa inoculada en el fondo. También es una buena idea limpiar la superficie de la mesada y los dedos con alcohol desinfectante antes de realizar el procedimiento.

    3) Pongo especial atención en que cuando hablo sobre el peróxido de hidrógeno como seguro y medio-ambientalmente benigno, me estoy refiriendo específicamente al peróxido a una concentración de 3% o menos. Concentraciones más altas, como 30%, 35%, y 50% están disponibles, pero son bastante riesgosas.

    Actualizaciones a la 3 Edición

    Aquí hay algunos cambios que he hecho desde que salió la 3er Edición del manual, Cultivando Hongos de Manera Fácil, en febrero, 1999. (Para los nuevos usuarios del manual, recomiendo también leer las Actualizaciones a la 2da Edición, ya que algunas de éstas realmente no se incorporaron en la 3ra Edición.)

    Resulta que el procedimiento para el Blanco de Diez Minutos anda mejor con pellet combustible hecho de madera blanda. El pellet combustible tanto de abeto como de álamo americano me ha dado un éxito consistente. Cuando probé el de roble, sin embargo, los pellets tomaron un tiempo largo para desintegrarse en aserrín en el proceso, y empecé a tener muchos frascos contaminados, probablemente porque la densidad mayor del aserrín de roble retardaba el proceso de calentamiento y enfriamiento. Puede ser posible contrarrestar estos problemas aumentando la cantidad de peróxido a usar.

    He tenido éxito por fin en fructificar Agaricus subrufescens, el hongo de la almendra, en substrato de pellet combustible (sobre todo de abeto, pero también de álamo americano, y en menor magnitud de roble) preparado por el método del peróxido. Este hongo parece preferir un substrato de aserrín firmemente empaquetado. Yo cultivo bloques de 3 - 3.5 kg con micelio, luego combino 3 o 4 de los bloques en un cultivo más grande (en una bolsa para basura puesta dentro de una caja de la manzana, por ejemplo). En el cultivo más grande se pone una cubierta de 5 cm de una mezcla de suelo y turba (50:50) con un puñado de yeso y bastante vermiculita para dar una textura friable. Entonces pongo todo en un sitio cálido, salpicando con agua la capa de cobertura regularmente hasta que el micelio se empiece a mostrar en la superficie. Finalmente, llevo la caja a un sitio más fresco, con aire suficiente y algo de luz, para permitir que se formen los hongos. El rendimiento hasta ahora ha sido pequeño, sólo un kg de hongos de una caja de manzana de substrato colonizado, suplementado hasta aproximadamente un 0.4% de nitrógeno. (Nota agregada después: El rendimiento parece mejorar si se deja el cultivo en un sitio cálido durante el proceso de fructificación).

    Una precaución con suplementos procesados que se van a usar sin autoclavar: tenga cuidado de que estos suplementos no se estropeen en el almacenamiento (o que ya no estén algo estropeados cuando usted los consigue). Si lo están, empezarán a descomponer su peróxido, aun cuando usted los pasteuriza. Guárdelos en un lugar fresco o frío, y contrólelos periódicamente dejando caer una cantidad pequeña en una solución de peróxido 3%. Si se produce un burbujeo, usted ya no podrá usarlos sin autoclavarlos primero.

    Aunque he usado cal de cáscara de ostra durante mucho tiempo, recientemente encontré que este aditivo--después de un almacenamiento prolongado--puede causar un nivel bajo de descomposición del peróxido. Por consiguiente ahora recomiendo piedra caliza molida. Si usted no puede encontrar piedra caliza molida, puede usar cal hidratada (la cal de Mason o cal para construcción), pero la mitad de lo que usaría de caliza. Yo uso actualmente unos 30 gr de cal hidratada para 4 kg de pellet combustible de roble para hacer substrato para Hericium o ostra del olmo. Por favor maneje la cal hidratada con cautela: puede quemar piel, ojos, y las membranas mucosas. No use cal de Dolomite, porque contiene magnesio que puede inhibir el desarrollo del hongo.

    24 de diciembre de 1999: Recientemente he encontrado que un remojo en vinagre durante toda la noche puede inactivar las enzimas que descomponen peróxido en una muestra de micelio. Probablemente otros ácidos débiles tendrán un efecto similar. Esto puede eventualmente ser útil en el futuro para inactivar las enzimas que descomponen el peróxido en substrato crudo drenable como virutas, cáscara de semilla del algodón, paja, u otros residuos agrícolas (así como en suplementos como el mijo), de manera que puedan prepararse con peróxido sin previa esterilización a presión.

    29 de diciembre de 1999: Experimentando con una muestra comercial de semillas para alimento de pájaros, encuentro que una noche de remojo en vinagre no elimina las enzimas que descomponen peróxido presentes en las semillas. Pero 15 minutos de ebullición de las semillas en vinagre diluido diez veces elimina casi todo la actividad de las enzimas. Al parecer la ebullición permite al vinagre penetrar las cubiertas duras de la semilla.

    12 de enero de 2000: ¡Feliz Micelio Nuevo!

    Sobre el almacenamiento y secado de las placas de agar: Recientemente he aprendido que el factor más importante que causa la caída en la concentración del peróxido en las placas de agar sin usar, es probablemente la evaporación del peróxido. Así que si usted seca sus placas durante mucho tiempo después de verter el agar, o si usted las guarda durante mucho tiempo, usted puede encontrar más contaminación de la esperada. Este problema puede evitarse aumentando ligeramente la concentración inicial del peróxido (si usted espera secar o guardar las placas durante mucho tiempo), o secando las placas para períodos más cortos. Al guardar las placas, asegúrese que estén efectivamente selladas en un recipiente con cierre hermético o bolsa de plástico.

    Sobre la cal de cáscara de ostra: he aconsejado no usar cal de cáscara de ostra porque puede "estropearse" y desarrollar enzimas que descomponen peróxido que causarán contaminación en los cultivos. Ahora encuentro que la cal fresca de cáscara de ostra tiene aún más enzimas que descomponen peróxido que la cal de cáscara de ostra que he guardado durante mucho tiempo. Pero hay un remedio: si pone la cal en el horno (con ventilación suficiente!) a 220 ° C durante una hora, usted puede destruir las enzimas. Entonces puede usar su cal de cáscara de ostra cocida sin problemas con cualquiera de los procedimientos del peróxido.

    3 de febrero de 2000: Aquí hay algunas fotos de lo que yo hago con mi substrato de pellet combustible. Nada notable aquí, pero estoy empezando a generar unos pocas "imágenes" para acompañar el manual sin fotos.

    Prueba del globo para determinar la concentración del peróxido

    Midiendo oxígeno de la decomposición del peróxido

    Cortando agar para transferir micelio
    Inoculando blanco de hongo
    Inoculando un balde de substrato
    Llenando una bolsa con substrato inoculado
    El substrato sellado en una bolsa, dentro de una caja
    Frascos de Blanco de Diez Minutos en un estante
    Algún equipamiento para cultivar hongos
    Vertiendo placas con agar

    8 de febrero de 2000: Para ayudar a localizar algunos de los suministros que se requieren en el manual del peróxido, he preparado una página de "Fuentes". Desgraciadamente, esta página por ahora será principalmente de ayuda a los residentes de los EE.UU., aunque cualquier información enviada desde otros países se agregará con agradecimiento. Visite la página de las Fuentes

    9 de marzo de 2000: He agregado un poco más de información de suministros de Springfield Scientífic en la página de las Fuentes, y corregí el número de teléfono de Pennington Seed.

    Una nota sobre probar materiales para ver si ellos son peróxido-compatibles o si en cambio contienen enzimas que descomponen peróxido: para una prueba más sensible, agregue un poquito de detergente al peróxido. Entonces las burbujas que se desarrollen aparecerán como espuma. También, el detergente ayudará a mojar el material y permitirá que la reacción de la enzima se desarrolle más rápido, en el caso que se desarrolle.

    22 de marzo de 2000: Para aquéllos de ustedes que quieren inocular substrato en masa tratado con peróxido con blanco de hongos producido en el comercio (sin peróxido), no hay problema: la última información que tengo es que el blanco sin peróxido crece fácilmente en el substrato tratado con peróxido sin ningún retraso apreciable para adaptarse al peróxido.

    5 de abril de 2000: Aparentemente, hay una ambigüedad en el manual con respecto a la cantidad de agua que uso para preparar substrato de pellet combustible. Para aclarar, yo uso aproximadamente 7 litros en total de agua para aproximadamente 9 libras (4 kgs) de pellet combustible de roble, dividida este agua por la mitad para las dos fases de preparación del substrato.

    5 de junio de 2000: He encontrado que el método de almacenamiento de agua destilada descripto en el manual no es tan eficaz para el almacenamiento a largo plazo como había pensado antes. No he podido revivir micelio de P. eryngii, H. ulmarius, o A. subrufescens que yo había guardado por dos años en agua destilada. Por consiguiente, yo tengo que recomendar que este método sólo sea usado para guardar micelio durante seis meses para la mayoría de las especies (yo pude reavivar Hericium erinaceus después de aproximadamente 2.5 años de almacenamiento). Desgraciadamente, parece que no hay un método perfecto de almacenamiento --ni siquiera el nitrógeno líquido funciona para todos los casos.

    20 de junio de 2000: He agregado un par de ideas sobre substrato a la página de Fuentes para las personas que viven en el REINO UNIDO o cerca.

    24 de julio de 2000: Aserrín secado al horno (es decir, aserrín producido por la molienda de madera secada al horno) ahora puede agregarse a la lista de substratos compatible con peróxido. Una muestra de este tipo de aserrín que yo probé para detectar enzimas que descomponen peróxido mostró una actividad muy baja.

    30 de septiembre de 2000: Una pista para el clonado de hongos: use los hongos más jóvenes que pueda conseguir, para la formación rápida del micelio.

    Al preparar substrato para hongos por el método del peróxido, sea cauto sobre agregar fertilizantes o suplementos de nitrógeno que contienen trazas de metales agregados, sobre todo hierro, manganeso y cobre. Estos metales acelerarán la descomposición del peróxido agregado.

    17 de noviembre de 2000: ¡La nueva 3er Edición del texto de Paul Stamets, Growing Gourmet and Medicinal Mushrooms (Cultivando Hongos Gourmet y Medicinales) está a la venta! Puede ponerse en orden ahora a través de mi eslabón a Amazon.com (pulse el botón en el título). Esta nueva edición ha sido extendida a más de 150 páginas comparada con la 2da edición, con nuevos capítulos sobre Agaricus blazei (Agaricus Sol Real), Agaricus brunnescens (Portobellos), Sparassis crispa (hongo coliflor), y otros.

    2 de enero de 2001: Recientemente he aprendido que la cal de Mason o cal hidratada es una forma de la cal dolomita, y como tal, contiene probablemente más magnesio que el óptimo para el crecimiento de los hongos. Entonce, tendré que revertir mis sugerencias anteriores de usar cal hidratada para una corrección del pH del medio basado en aserrín. Aparentemente es mejor usar piedra caliza molida si usted puede conseguirla, o harina de cáscara de ostra. Esta última tiene que ser cocinada durante un par de horas a 220 ° C para asegurar que no contenga enzimas que descomponen peróxido.

    Otro producto de viruta de madera libre de enzima, disponible comercialmente, puede agregarse a la lista de substratos compatibles con peróxido. Se llama Beta-Chip™ y es una cama para ratas de laboratorio hecha de astillas de arce de 1/8 de pulgada, por una compañía en Nueva York. Vea la página de Fuentes para más información, y gracias a Michael Joy por traer esto a mi atención.

    21 de enero de 2001: Al parecer, no he puesto las conversiones métricas en algunas medidas aquí y allá en los manuales. Para referencia futura,

    1 (quart) = cuarto de galón = 0.95 litros

    1 taza = 235 mls

    1 cuchara = 15 mls

    1 onza = 28.35 gramos

    He agregado una casa de suministros científicos en Inglaterra en la página de las Fuentes.

    30 de enero de 2001: Al probar nuevos substratos o suplementos para comprobar la presencia de enzimas que descomponen peróxido, no es necesario o aconsejable usar concentraciones de peróxido superiores al 3%. Usted podría obtener resultados confusos si usa peróxido suficientemente concentrado como para oxidar el substrato y liberar dióxido de carbono. Así que adhiérase al peróxido 3% para probar las enzimas.

    Una nota más sobre la cal hidratada: Ahora he averiguado que ciertas marcas de cal hidratada no contienen magnesio superior a una fracción de uno por ciento. Éstas serían aceptables para el cultivo de hongos. Siga el mensaje doméstico: ¡inspeccione los números de la composición en el envase!

    14 de febrero de 2001: Han llamado mi atención sobre mi receta para MYA que requiere 5-7 pellets combustibles de madera por litro, pero estos pellets pueden variar en tamaño en diferentes partes del mundo. Así que para el registro, esa cantidad de mis pellets pesa aproximadamente 0.15 onzas, o 4.25 gramos.

    27 de febrero de 2001: He agregado un proveedor de pellets combustible de roble en Arkansas, con sucursal en New Mexico, a la página de las Fuentes.

    3 de marzo de 2001: Hace unos días yo anuncié información sobre el uso de mijo como un suplemento de nitrógeno, y paja hecha pellet como substrato. Desde entonces he decidido que estos anuncios eran prematuros y necesitan una evaluación más extensa. Los tendré al tanto.

    8 de marzo de 2001: He colocado algunas fotografías más en la lista de fotos. La mayoría de estas fotos ahora también están organizadas en una Muestra de diapositivas, con algún comentario extra, accesible desde el Menú Principal. Y a propósito, si cualquiera de ustedes quiere contribuir con fotografías, por favor me lo dicen. Deben ser de un tamaño modesto para ser cargadas rápidamente --yo no tengo un software para manipular fotografías para reducir los archivos.

    6 de junio de 2001: Estoy contento de anunciar que la paja en pellets (vendida como cama para animales en algunas áreas de EE.UU.) puede usarse con éxito como un substrato para el protocolo de "Agregar-y-agitar" para el hongo ostra de olmo. Para usar este material, la concentración del peróxido necesaria debe ser casi el doble comparada con la recomendada para el pellet combustible en el Volumen II. La paja en pellets contiene alguna actividad perceptible de las enzimas que descomponen peróxido, pero el nivel es bastante bajo y la concentración más elevada del peróxido puede compensar la descomposición del peróxido resultante. Yo he probado esto sólo con los hongos ostra del olmo, aunque las especies de Pleurotus también deberían andar bien, y otras especies deberían ser probadas. La paja en pellets es un buen agregado a la lista de substratos apropiados, ya que requiere mucho menos espacio de almacenamiento que la paja y para los cultivos, no necesita picarse como la paja, tiene una textura fina como el aserrín para el crecimiento micelial, y se hace de un producto agrícola de desecho que no deriva de la tala de bosques. Vea la página de Fuentes para encontrar el nombre de un proveedor. Gracias a Andy Kayzek por proporcionarme una muestra de 10 lb de paja en pellets de esta fuente para hacer las pruebas.

    También he aprendido que la cáscara de la semilla de algodón puede usarse con éxito como substrato para los hongos ostra, incluyendo el P. eryngii, con el protocolo para paja a temperatura ambiente del Volumen II, con tal que se use la alternativa de la cal hidratada. Gracias a Michael Joy por esta información.

    Finalmente, he agregado un poco de información sobre el peróxido y el aserrín secado al horno, en la página de las Fuentes.

    6 de agosto de 2001: Me han señalado que hay un error en la receta para el medio MYA en ambos, Volumen 1 y Volumen 2. La cantidad de agar y malta en polvo debe ser la misma en onzas (0.42 onz.) así como en gramos (12 grs). Afortunadamente, esto no hace mucha diferencia para el crecimiento del micelio.

    También, me han instado a que recuerde a las personas que el algodón, no siendo una producción de alimento, se rocía a menudo con pesticidas no aprobados para el uso en alimentación. Por consiguiente, la cáscara de la semilla de algodón puede contener residuos de pesticidas que usted no querría tener en su substrato. Por otro lado, los hongos a menudo pueden descomponer tales químicos y hacerlos inofensivos, de manera que nosotros no sabremos el resultado real de cultivar hongos en cáscara de semilla de algodón tratadas con pesticida hasta que alguien examine los hongos para determinar el contenido de pesticida.

    29 de diciembre de 2001: He encontrado que el mycelio no crecerá bien en algunas clases de cartulina gris (véase el volumen 2), pero Sr. Michael Lim me dice que él haya tenido éxito con cartulina de los cartones del huevo.

    27 de febrero de 2002: Bill Chalmers de "Western Biologicals" me dice que la capa de cobertura (pg. 29 del volumen 1) para los hongos Agaricus no debe contener el yeso, pues conduce el pH abajo en la interacción con el mycelio. Esto bajará la última producción de hongos. Bill dice que el carbonato del calcio es la fuente preferida del calcio en la cobertura, como ella promueve un pH más alto.

    J. Croskey señala que las virutas y el aserrín de la madera secada al horno pueden contener a veces los fungicidas o los preservativos. Obviamente, tal material no funcionará para la cultivación de hongos.

    He recibido informes de problemas en la preparación con el peróxido de la paja del arroz. Estoy consultando con los cultivadores implicados para intentar determinar la fuente de la dificultad y desarrollar un remedio. Si cualquiera de usted está utilizando con éxito el peróxido con la paja del arroz, por favor, déjeme saber. Gracias.

    12 de abril de 2002: L Gehrken señala éxito usando el protocolo del peróxido con la paja del arroz (contenido de agua 20% antes del tratamiento). Sr. Gehrken reduce el periodo de remoja a apenas 1,5 minutos. La paja del arroz es mucho más absorbente que la paja del trigo, y llega a ser demasiado mojada si se sumerge por períodos más largos.

    H. Hajj escribe que el peróxido se puede descomponer rápidamente para la prueba del globo con la adición de un o dos cristales pequeños de permanganato del potasio. Envuelva ligeramente los cristales en un poco de papel de tejido fino de modo que no caigan en la solución del peróxido hasta que usted tiene su globo en lugar. Alerta: no utilice el permanganato del potasio con concentraciones del peróxido más arriba que 3%, para evitar reacciones violentas. Las altas concentraciones primero se deben diluir.

    A. Janjigian dice que el gluten de maíz vendido comercialmente como herbicida orgánico funcionará bien como suplemento del nitrógeno para el método del peróxido. Aunque no es necesariamente barato, es más fácil obtener en los E.E.U.U. que el suplemento CG60 de Sylvan. Una marca es "Concern" y un producto similar se vende por Gardens Alive (http://www.gardensalive.com).

    26 de noviembre de 2002: Se han traído a mi atención dos problemas en la traducción de Volumenes 1 y 2--en la receta para el medio de MYA. Primero, donde dice el "polvo liviano de malta" debe decir "polvo de malta clara." Es el color de la malta que es importante, no el peso. Segundo, donde dice "polvo de hornear" ("Ajusto el pH con un poco de polvo de hornear") esto debe referir al bicarbonato de sodio.

    R. Wayne

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